王 雨，王兆广，刘泽军，夏中曦，范玉顶，钟其旺

(1.江西农业大学 生物科学与工程学院/江西省农业微生物资源开发与利用工程实验室，江西 南昌 330045； 2.中国水产科学研究院 长江水产研究所，湖北 武汉 430223)

黄鳝(Monopterusalbus)属硬骨鱼纲、合鳃目、合鳃科、黄鳝属，其肉质鲜美，具有一定的药用价值以及较高的营养价值，是我国名优经济鱼类之一[1]。目前，黄鳝主要是网箱养殖[2]，饲养环境过度拥挤，进食受限，活动空间过小，使得部分黄鳝生长状况不佳，肌肉的质量下降[3]。不仅如此，冬季低温以及疾病也会使黄鳝体质量下降。鱼类肌肉的生长过程受多种转录因子以及环境因素影响，其中atrogin-1作为E3泛素连接酶参与蛋白质泛素化降解[4]，通过调节肌肉生长相关的转录因子来控制肌肉的质量，是参与肌肉萎缩的关键酶之一[5-6]。目前，国内对于黄鳝肌肉生长的生理机制研究甚少，因此对黄鳝肌萎缩基因atrogin-1的深入研究尤为重要。

atrogin-1(又称MAFBX,Fbxo32)是F-box家族的成员之一，该家族的蛋白质均包含1个约40个氨基酸的基序，即F-box。F-box是泛素蛋白连接酶复合物SCF(SKP1-cullin-F-box)的4个亚基之一，具有磷酸化依赖性泛素化作用[7-8]。在正常情况下，atrogin-1主要受生长因子IGF-1和胰岛素抑制，这2种生长因子通过AKT/FoxO以及AKT/mTOR通路发挥调节作用[9]。在饥饿、炎症情况下，机体内IGF-1和胰岛素含量下降[10]，糖皮质激素含量升高，atrogin-1被激活，发挥泛素连接酶的作用，识别目的蛋白，使其发生泛素化降解[11]。目前，对atrogin-1基因的研究主要集中在骨骼肌和心肌中[12]。有研究表明，atrogin-1基因在斑马鱼及大西洋鲑其他组织中也有表达[13]。

为研究黄鳝atrogin-1蛋白的功能及细胞内定位，分别构建了atrogin-1的原核以及真核表达载体。重组蛋白在大肠杆菌中表达分为可溶性表达和非可溶性表达，真核生物的基因在原核表达过程中很容易形成包涵体，这种包涵体就是非可溶性表达[14]。由于包涵体无生物活性，因此分离纯化之后要对其进行复性处理，过程繁琐，且复性后的蛋白质折叠可能发生改变[15]。为了避免包涵体的形成，使用冷休克表达载体,以有效促进蛋白质的可溶性，并优化重组菌株的表达条件，旨在为atrogin-1蛋白的功能研究奠定基础。

研究所用健康黄鳝购自江西瑞洪养殖场，置于实验室水族箱中养殖数周，使黄鳝稳定，每日喂食，水温(25±1)℃，每天用曝气自来水换水一次。

大肠杆菌DH5α购自生工生物工程(上海)股份有限公司，Transetta(DE3) 感受态细胞购自北京全式金生物技术有限公司。293T细胞、pEGFP-N1质粒、pET28a (+) 质粒、pGEX6P-1质粒和pCold-TF质粒由本实验室保藏。

SanPrep柱式DNA胶回收试剂盒、SanPrep柱式PCR产物纯化试剂盒、无水乙醇、DEPC、氨苄青霉素钠等均购自生工生物工程(上海)股份有限公司；DNaseⅠ、Prime STAR Max高保真酶、T4 DNA连接酶均购自宝生物工程(大连)有限公司；限制性内切酶EcoRⅠ、BamHⅠ、HindⅢ均购自Promega公司；动物组织总RNA提取试剂盒、RNA纯化试剂盒等购自天根生化科技(北京)有限公司；LipoD293TMDNA体外转染试剂盒购自SignaGen公司；Hoechst 33342购自Sigma公司。

利用动物组织总RNA提取试剂盒提取黄鳝肌肉总RNA，DNaseⅠ去除基因组DNA，并用RNA纯化试剂盒纯化,1%琼脂糖电泳检测，NanoDrop 2000测定RNA浓度及纯度。取纯化后的RNA进行反转录获得cDNA。反转录步骤：取1 μg左右的RNA、2 μL 60 μmol/L oligo dT,加无核酸酶水至10 μL。混匀后于70 ℃处理5 min，立即冰浴5 min，10 000×g离心1 min。加入5×M-MLV Buffer 5 μL、dNTP(2.5 mmol/L)2.5 μL、RNA酶抑制剂(40 U/μL)0.7 μL、M-MLV(200 U/μL)1 μL,加无核酸酶水至25 μL。42 ℃ 反应60 min,95 ℃ 变性5 min，-20 ℃保存。

在GenBank数据库中搜索黄鳝atrogin-1基因(登录号：XM_020596809.1)。根据基因序列设计引物，上游引物引入BamHⅠ酶切位点及保护碱基，下游引物引入HindⅢ酶切位点及保护碱基(表1)。PCR 25 μL反应体系：cDNA 1 μL、上下游引物各0.5 μL(终浓度0.2 μmol/L)、Prime STAR Max(2×) 12.5 μL、灭菌去离子水10.5 μL。PCR反应程序：98 ℃变性10 s，55 ℃退火5 s，72 ℃延伸30 s，40个循环。1%琼脂糖凝胶电泳检测。

将含有pCold-TF质粒的大肠杆菌，于37 ℃过夜摇培，用质粒提取试剂盒提取质粒，电泳检测。用BamHⅠ和HindⅢ 37 ℃过夜双酶切pCold-TF质粒及atrogin-1基因的PCR产物。对酶切产物切胶回收并进行电泳检测。连接反应体系：1 μL pCold-TF质粒、2.5 μL PCR酶切产物、1 μL T4连接酶Buffer、1 μL T4连接酶、4.5 μL灭菌去离子水。16 ℃过夜连接，连接产物转化至大肠杆菌DH5α中，对长出的克隆进行PCR检测，检测正确后送生工生物工程(上海)股份有限公司进行测序。将测序正确的菌株提取质粒，并转化到Transetta(DE3) 感受态细胞中。

表1 PCR引物序列Tab.1 PCR primer sequences

注：引物序列中下划线为相应酶切位点。

Note：The underlines are restriction enzyme cutting sites.

蛋白质的诱导表达参考文献[16]中的方法。将含有atrogin-1重组质粒的Transetta(DE3) 菌接种到LB液体培养基中(氨苄青霉素和氯霉素的终质量浓度均为50 μg/mL)，37 ℃条件下230 r/min培养。当细菌生长达到OD600=0.4～0.6时，加入终浓度为0.5 mmol/L的IPTG，于16 ℃继续培养。24 h后取出，离心弃上清，沉淀用平衡液(20 mmol/L Tris-HCl， pH值为7.5，10%甘油，0.5 mol/L NaCl)重悬，超声破碎。12 000 r/min离心取上清，同体积平衡液重悬沉淀，将菌体裂解液、上清、沉淀分别进行SDS-PAGE凝胶电泳，检测蛋白质表达情况。

1.7.1 atrogin-1蛋白可溶性表达载体的筛选 分别构建含有atrogin-1的pET28a(+)以及pGEX6P-1重组菌株，挑出阳性克隆，将测序正确的菌进行诱导表达。将过夜培养的重组菌按照1%的比例接种到含有抗生素的LB液体培养基中，于37 ℃培养至OD600为0.4～0.6，加入IPTG，使终浓度为0.5 mmol/L，16 ℃继续培养24 h，SDS-PAGE凝胶电泳检测蛋白质表达情况。

1.7.2 诱导剂浓度对atrogin-1蛋白表达的影响 将过夜培养的重组菌pCold-TF-atrogin-1/Transetta(DE3)按照1%的比例接种到LB液体培养基中(氨苄青霉素和氯霉素的终质量浓度均为50 μg/mL)，于37 ℃摇床培养至OD600为0.4～0.6，分为7份，分别加入IPTG，使其终浓度分别为0、0.05、0.10、0.30、0.50、1.00、1.20 mmol/L，16 ℃继续培养24 h，SDS-PAGE凝胶电泳检测蛋白质表达情况。

1.7.3 诱导时间对atrogin-1蛋白表达的影响 将过夜培养的重组菌pCold-TF-atrogin-1/Transetta(DE3)按照1%的比例接种到LB液体培养基中(氨苄和氯霉素的终质量浓度均为50 μg/mL)，于37 ℃培养至OD600为0.4～0.6，加入IPTG，使终浓度为0.5 mmol/L，16 ℃继续培养，分别在0、3、6、9、20、24 h时间点取样，SDS-PAGE凝胶电泳检测蛋白质表达情况。

将诱导表达的大量重组菌超声破碎后，4 ℃条件下12 000 r/min离心1 h，取上清，用0.45 μm的滤膜过滤后，滤液过Ni-NTA亲和柱，然后用不同浓度的咪唑(20～1 000 mmol/L)对Ni-NTA亲和柱进行洗脱，收集不同浓度下的洗脱液，用10%的SDS-PAGE凝胶电泳进行检测。蛋白质浓度用Bradford法测定[17]。

将pEGFP-N1质粒以及atrogin-1基因的PCR产物进行EcoRⅠ、BamHⅠ双酶切，用T4连接酶过夜连接，连接产物转化至大肠杆菌DH5α中，对长出的克隆进行PCR检测，检测结果正确后，提取质粒进行EcoRⅠ、BamHⅠ双酶切，将切出正确条带的质粒送生工生物工程(上海)股份有限公司测序。用无内毒素提取试剂盒提取质粒，测定质量浓度，进行细胞转染。在已长至单层的293T细胞中加入1 μg重组质粒pEGFP-N1-atrogin-1，按照LipoD293TMDNA体外转染试剂盒说明书操作，以pEGFP-N1质粒作为空白对照。36 h后用荧光显微镜观察转染情况。经荧光显微镜观察，若融合蛋白已表达，PBS缓冲液漂洗3次，每次5 min。加入终质量浓度为10 μg/mL的Hoechst 33342避光孵育15 min，PBS缓冲液漂洗3次，每次5 min。荧光显微镜下观察、拍照。蓝色荧光信号指示细胞核的位置，绿色荧光信号指示EGFP融合蛋白细胞定位。

从GenBank数据库中获得黄鳝atrogin-1(Fbxo32)的mRNA序列(登录号：XM_020596809.1),确定黄鳝atrogin-1基因ORF为1 074 bp，编码357个氨基酸。利用设计的引物进行PCR扩增，1%琼脂糖凝胶电泳结果显示，扩增条带大小与目的基因大小一致(图1)。

挑取阳性克隆进行菌落PCR，条带大小正确(图2泳道3、4)。将含有目的基因的重组菌过夜培养，提取质粒，用BamH Ⅰ和Hind Ⅲ进行双酶切，电泳检测条带大小正确，证明pCold-TF-atrogin-1载体构建成功(图2泳道1、2)。

M:DL2000 DNA Marker；1:atrogin-1基因

M:DL10000 DNA Marker；1:pCold-TF-atrogin-1质粒；2:限制性内切酶BamH Ⅰ和Hind Ⅲ双酶切pCold-TF-atrogin-1质粒；M1：DL2000 DNA Marker；3、4：pCold-TF-atrogin-1的PCR验证

将含pCold-TF菌株和含有pCold-TF-atrogin-1的重组菌Transetta(DE3),在16 ℃用0.5 mmol/L IPTG诱导24 h。含pCold-TF菌株表达的蛋白质大小为54 ku，atrogin-1蛋白预测分子质量大小为41.8 ku，重组蛋白分子质量为95.8 ku，通过凝胶电泳检测条带大小与预测一致(图3)。

2.4.1 atrogin-1蛋白可溶表达载体的筛选 图4为16 ℃条件下用0.5 mmol/L的IPTG诱导24 h后蛋白质表达情况。结果显示，3种表达载体均可表达黄鳝atrogin-1蛋白，但是仅pCold-TF载体能够表达可溶性的atrogin-1融合蛋白，而以pET28a(+)和pGEX6P-1构建的重组载体，诱导表达时上清几乎没有融合蛋白，大部分的表达产物以包涵体的形式存在，不利于后续纯化和功能研究。因此，本研究选取pCold-TF作为atrogin-1的表达载体。

M:蛋白质Marker;1、2、3：pCold-TF菌体裂解液、上清、沉淀；4、5、6：重组质粒pCold-TF-atrogin-1的菌体裂解液、上清、沉淀

M:蛋白质Marker;1、 2：pCold-TF-atrogin-1菌体裂解液、上清；3、 4：pET28a(+)-atrogin-1菌体裂解液、上清；5、 6：pGEX6P-1-atrogin-1菌体裂解液、上清

2.4.2 诱导剂浓度对atrogin-1蛋白表达的影响 将含有pCold-TF-atrogin-1的重组菌Transetta(DE3)在16 ℃用不同浓度(0、0.05、0.10、 0.30、0.50、1.00、1.20 mmol/L)的IPTG诱导24 h，结果表明，0.05～1.20 mmol/L IPTG诱导条件下,蛋白质表达无明显差异(图5)。

M:蛋白质Marker；1、3、5、7、9、11、13：pCold-TF-atrogin-1/Transetta(DE3)菌株分别用0、0.05、0.10、0.30、0.50、1.00、1.20 mmol/L IPTG诱导表达后的菌体裂解液;2、4、6、8、10、12、14:pCold-TF-atrogin-1/Transetta(DE3)菌株分别用0、0.05、0.10、 0.30、0.50、1.00、1.20 mmol/L IPTG诱导表达后菌体裂解液上清

2.4.3 诱导时间对atrogin-1蛋白表达的影响 图6为含有pCold-TF-atrogin-1的重组菌Transetta(DE3)在16 ℃用0.5 mmol/L IPTG诱导不同时间(0、3、6、9、20、24 h)的蛋白质表达情况。从图6可以看出，诱导3 h后，上清中有部分目的蛋白；20 h时，蛋白质量基本达到最大值；24 h之后，蛋白质表达无明显变化，且上清中可溶性蛋白量略有减少。可见，atrogin-1蛋白诱导20 h即可，诱导时间过长，反而使得部分蛋白质可溶性降低。

将超声破碎后的菌液上清用Ni-NTA柱纯化，用不同浓度(20、40、60、80、100、200、500、1 000 mmol/L)的咪唑进行洗脱(图7)。结果表明，100 mmol/L和200 mmol/L的咪唑可以将大部分的杂蛋白洗脱；更高浓度的咪唑，如500 mmol/L、1 000 mmol/L的咪唑能够洗脱较为纯净的目的蛋白。收集500、1 000 mmol/L的咪唑洗脱液，浓缩脱盐后，于-80 ℃储存。

M:蛋白质Marker;1、3、5、7、9、11：pCold-TF-atrogin-1/Transetta(DE3)菌株诱导表达0、3、 6、9、20、24 h后的菌体裂解液；2、4、6、8、10、12：pCold-TF-atrogin-1/Transetta(DE3)菌株诱导表达0、3、 6、9、20、24 h后的菌体裂解液上清

M:蛋白质Marker; 1：菌体裂解液； 2：滤膜滤过液； 3：流穿液； 4—10:0、20、40、60、80、100、200 mmol/L咪唑洗脱液； 11、12：500、1 000 mmol/L咪唑洗脱液

根据测得的OD值，制作蛋白质含量测定标准曲线，y=0.850 3x-0.009 1(R2=0.999)，将测得的相应OD值带入计算，得到菌体裂解液、流穿液、蛋白洗脱液的蛋白质含量(表2)。纯化后收集得到的蛋白质含量约占总蛋白的43.35%。

表2 atrogin-1蛋白得率分析

转染后36 h在荧光显微镜下观察到绿色荧光，经Hoechst 33342 染料染色后，在紫外光下可以看到被染成蓝色的细胞核，EGPF蛋白和atrogin-1融合蛋白在293T细胞的细胞核及细胞质均有表达(图8)。

融合蛋白呈绿色 (EGFP)，细胞核呈蓝色 (Hoechst 33342)

本研究通过构建原核表达载体获取atrogin-1重组蛋白，并且对重组菌的表达进行条件优化，以期获得高纯度、高质量蛋白质。pCold-TF载体使用CspA启动子，诱导温度介于15～37 ℃，最适温度在15 ℃左右[14]。本研究发现,诱导剂的浓度对atrogin-1蛋白表达基本没有影响，这与曾发姣等[14]的研究结果一致，但与前人的研究结果不同。彭丹等[18]在Bn COP1蛋白(pCold-TF载体)表达研究中发现，最适IPTG浓度为0.8 mmol/L；而周波等[19]在乌桕SsSAD蛋白(pCold-TF载体)的表达研究中发现，最适IPTG浓度为0.6 mmol/L。本研究中，目的蛋白的表达量随着诱导时间的增加而增加，在诱导20 h后，蛋白质表达量达到最大值，20 h之后，可溶性蛋白的量略有减少。因此，pCold-TF-atrogin-1/Transetta(DE3)菌株诱导最适条件应为:16 ℃培养20 h左右；诱导剂浓度在0.05～1.00 mmol/L均可。可见，载体的选择对于蛋白质表达极为重要[20]，在pET28a(+)以及pGEX6P-1的重组载体中，atrogin-1蛋白均能大量表达，但是都处于包涵体状态，对后续试验造成不必要的麻烦，而冷休克载体pCold-TF-atrogin-1能在低温条件下使其他蛋白质合成受到抑制，在IPTG诱导下，目的基因优先表达。

细胞转染结果表明，atrogin-1蛋白在细胞质及细胞核中均有表达，提示不同的蛋白质定位可能与其功能靶标相关。对黄鳝atrogin-1基因的研究不仅有助于了解黄鳝骨骼肌萎缩的机制，也对后续研究有着重要作用。治疗骨骼肌萎缩是目前世界难题之一，研究发现，泛素连接酶是骨骼肌萎缩的关键酶，作为泛素连接酶之一的atrogin-1有着较为广阔的研究前景。随着研究人员的不懈努力，发现了atrogin-1越来越多的功能。SKURK等[21]发现，atrogin-1在抑制心肌肥大方面有着重要作用；肌细胞生成素MyoG是骨骼肌分化的必需因子，JOGO等[22]发现，该因子与atrogin-1有着密切关系；真核翻译起始因子eIF3作为一个重要的调节因子，与atrogin-1存在着直接的相互作用[23]；MyoD基因家族是参与调节肌肉发育以及分化的重要转录因子，MyoD能够被atrogin-1识别，从而被降解[11]。

本研究纯化后的蛋白质可用于后续atrogin-1抗体的制备和蛋白质表达模式研究，为atrogin-1的功能研究奠定基础。

河南农业科学2020年5期